近日，丸美股份研发中心的最新科研成果《Enhanced exopolysaccharide yield and antioxidant activities of Schizophyllum commune fermented products by the addition of Radix Puerariae》在英国皇家化学学会权威期刊《RSC Advances》（2021影响因子3.361）上喜获认可发表。该成果基于双向发酵技术，研究了药食同源植物葛根对裂褶菌液态发酵体系的协同影响，通过大量科学数据验证发现，该发酵体系产出的多糖多酚复合成分显示出良好的保湿、抗氧化、抗衰老等复合生物活性，具有良好的护肤产品开发和应用前景，结合前期结果和正在开展的工作，为裂褶菌液态发酵作为双向生物转化平台的应用性和发展潜力提供了有力支撑。

美妆市场数据分析显示，如今的消费者越来越重视护肤品的功效性与天然性，这也对长期致力于为消费者提供高质量美妆产品的丸美股份研发团队提出了更高的要求，同时也更加坚定了丸美建设生物技术平台，利用最新科学研究成果追求“美与健康”的初心。

2021年《化妆品监督管理条例》及相关法规的相继颁布与施行，明确了“鼓励和支持运用现代科学技术，结合我国传统优势项目和特色植物资源研究开发化妆品”的政策导向，为我国化妆品行业高质量发展开启了新的篇章。而作为中国化妆品头部企业，丸美股份自成立之初就十分重视对研发的投入、重视研发人才梯队的建设、重视化妆品前沿技术平台化的打造，并在此战略指导下提前布局了生物发酵技术平台，本次植物基双向发酵技术研究成果获得国际权威期刊认证，标志着丸美在生物发酵技术的研究领域迈上了一个全新的台阶，升级了企业基于“药食同源”传统文化的创新植物发酵产品的最新实践。

裂褶多糖（Schizophyllan, SPG）具有良好的生物活性，作为化妆品中的保湿剂、临床的抗癌药物、食品保鲜抗菌膜等有一定的应用[1-3]，然而受限于如今SPG液态发酵生产过程中广泛存在的发酵周期长、产量低等问题，SPG的工业化生产和产业化应用尚有巨大的发展空间[4,5]。丸美股份研发团队基于对SPG的深入研究和相关技术难点的认识、联合广东药科大学研究人员，对中国特色药食同源植物和发酵菌种进行了长期、大量的筛选和研究，获得了多种可为SPG赋能赋活的植物基质，为裂褶菌双向发酵平台的构建打下坚实的基础。本次研究选取的葛根是一种经典的药食兼用植物，富含活性物质如葛根素、染料木素、大豆异黄酮等成分，这些成分赋予了其抗氧化、美白及抗衰老等多种护肤功效[6,7]。更为重要的是，葛根富含纤维、淀粉等成分，可经由裂褶菌代谢产生的大量木质纤维素酶、木聚糖酶以及纤维素酶[8]深度分解成为葡萄糖，而葡萄糖恰恰是组成SPG的单糖成分，从而大幅度提升了SPG的多糖产量。

研究团队在对发酵产物进行活性评价研究时发现，裂褶菌葛根发酵上清液的抗氧化活性较于单一的裂褶菌发酵液或葛根提取液均有极显著的提升，利用高效液相色谱与质谱联用（LC-MS/MS）技术对发酵产物进行进一步全成分分析，并最终鉴定多达25种抗氧化活性成分，主要包括：6种多酚类成分（24%），7种酸类成分（28%），4种黄酮类成分（16%）以及8种其他成分（32%）；除此之外，我们还惊喜地发现，发酵产物中除含有以葛根素等代表性酚类成分外，还成功鉴定出包括白藜芦醇、异丹叶大黄素，秦皮乙素在内的大量并未在葛根提取物中发现的新型活性成分，说明本双向发酵体系可以真正意义上实现植物基质来源活性物的高效生物转化。

双向生物发酵技术在化妆品应用上前景广阔，可有效改善传统植物提取带来的植物残渣容易污染环境、提取物活性低等关键问题。借助对发酵技术与发酵环境的优化、发酵菌种的选育等科学方式，获得活性更高的多重功效成分，赋能开发更多兼具功效与环境友好型的产品，提经济效益与社会效益，是丸美长期坚持投入研发基础研究的重要目标之一。20年开放创新的基因，垫定了丸美股份研发中心探索整合全球前沿科学技术以驱动化妆品高质量发展的方向，同时也是丸美研究人员满怀热忱不断攻关科研难题以升级护肤抗衰方案的驱动力。丸美股份研发中心现已形成配方应用中心，基础研究中心，功效评价测试中心三方联动的完善体系，同时成立技术支持中心，以市场智库的角色搭建科研与消费者需求之间的双向桥梁。

截止目前，丸美已申请自主研发专利316项，其中134项获得授权，12项国际专利，并有多项专利获得国家专利奖。

未来，丸美股份将继续在生物发酵技术领域深耕细作，深化对中国特色植物研究与应用的能力，以科技推动行业发展。

[1] M. Shoaib, S.M.R. Quadri, O.B. Wani, E. Bobicki, G.I. Garrido, A. Elkamel, A. Abdala, Adsorption of enhanced oil recovery polymer, schizophyllan, over carbonate minerals, Carbohyd Polym, 2020, 240, 116263.

[2] L. Kubala, J. Ruzickova, K. Nickova, J. Sandula, M. Ciz, A. Lojek, The effect of (1→3)-β-d-glucans, carboxymethylglucan and schizophyllan on human leukocytes in vitro, Carbohyd Res, 2003, 338, 2835-2840.

[3] S. Hamedi, S.A. Shojaosadati, V. Najafi, V. Alizadeh, A novel double-network antibacterial hydrogel based on aminated bacterial cellulose and schizophyllan, Carbohyd Polym, 2020, 229, 115383.

[4] M.K. Singh, M. Kumar, I.S. Thakur, Proteomic characterization and schizophyllan production by Schizophyllum commune ISTL04 cultured on Leucaena leucocephala wood under submerged fermentation, Bioresource Technol, 2017, 236, 29-36.

[5] C. Shu, H. Hsu, Production of schizophyllan glucan by Schizophyllum commune ATCC 38548 from detoxificated hydrolysate of rice hull, J Taiwan Inst Chem E, 2011, 42, 387-393.

[6] X. Zhang, Q. Liu, C. Zhang, J. Sheng, S. Li, W. Li, et al., Puerarin prevents progression of experimental hypoxia-induced pulmonary hypertension via inhibition of autophagy, J Pharmacol Sci, 2019, 141, 97-105.

[7] Y. Wenli, Z. Yaping, S. Bo, The radical scavenging activities of radix puerariae isoflavonoids: A chemiluminescence study, Food Chem, 2004, 86, 525-529.

[8] E. Metreveli, E. Kachlishvili, S.W. Singer, V. Elisashvili, Alteration of white-rot basidiomycetes cellulase and xylanase activities in the submerged co-cultivation and optimization of enzyme production by Irpex lacteus and Schizophyllum commune, Bioresource Technol, 2017, 241, 652-660.

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